НИР «Коррекция микробиологической чистоты воздушной среды офисно-делового пространства»

В мае 2018 года в совместно с Агентством инноваций города Москвы была проведена научно-исследовательская работа по теме:
Изучение возможности коррекции микробиологической̆ чистоты воздуха в помещениях Агентства инноваций города Москвы с использованием устройств фотокаталитической очистки воздуха «ТИОКРАФТ» 

Цель работы

Целью работы являлась оценка микробиологического состояния воздуха в помещениях с потенциально высоким микробиологическим загрязнением, а также определение возможности его нормализации с применением фотокаталитических обеззараживателей воздуха «Тиокрафт М400» и «Тиокрафт М400АЕ»

  Выбор помещений и подготовка к измерениям

  Для проведения измерений были выбраны разные по площади места со значительным количеством сотрудников или посетителей. В итоге были выбраны следующие помещения, расположенные на 4-м этаже Агенства: кабинет Руководителя (No7) (16,2 м2), кабинет Главного бухгалтера (18,1 м2) и помещение «Open Space» (285,3 м2)

В кабинетах Руководителя и Главного бухгалтера были установлены по одному рециркулятору «Тиокрафт М400» с установленной производительностью 80 м3/ч, в помещении «Open Space» - два рециркулятора «Тиокрафт М400АЕ» с общей производительностью 300 м3/ч.

Места установки приборов отмечены в протоколах исследований.
Количество точек отбора проб в помещениях определялось по рекомендованной для метода графическогокатрированияформулеn>S1/2, гдеS–площадьпомещений.
В итоге количество точек отбора проб составило: для кабинетов Руководителя и Главного бухгалтера– по6,дляпомещения«OpenSpace»-17

Условия инкубации микроорганизмов

Высевание КОЕ из воздуха проводилось на стандартные микробиологические чашки Петри диаметром 9 см на 2% агар, приготовленный на среде, содержащей 1% триптон, 1% NaCl, 0.1% глюкозу и 0.2% цитрат натрия, рН 6.9-7.0. После отбора проб чашки помещали в инкубаториинкубировалипритемпературе+37оСвтечение 48ч.
Условия инкубации микроорганизмов. Отбор проб проводился на стандартные микробиологические чашки Петри диаметром 9 см на 2% агар, приготовленный на среде, содержащей 1% триптон, 1% NaCl, 0.1% глюкозу и 0.2% цитрат натрия, рН 6.9-7.0. После отбора проб чашки помещали в инкубатор и инкубировали при температуре +37oС в течение 24 ч.

Для окраски колонии снимали с агара и ресуспендировали в 100 мкл дистиллированной воды. 10-20 мкл суспензии наносили на обезжиренное предметное стекло и фиксировали на пламени газовой горелки. Окраска фуксином проводилась в растворе карбол-фуксина (1г основного фуксина растворялся в 2 мл глицерина и объем раствора доводился до 100 мл 5 % раствором фенола) в течение 20-60 сек, затем образцы промывались дистиллированной водой и высушивались. Окраска по Граму производилась карболовым раствором генцианвиолета (1 г генцианвиолета растворялся в 10 мл спирта, затем в раствор добавляли 100 мл 2% фенола) в течение 2 мин, затем образец промывали дистиллированной водой и окрашивали в растворе Люголя (0.3% йод, 0.6% йодистый калий) в течение 2 мин, промывали дистиллированной водой и обесцвечивали спиртом. Микроскопия проводилась при масляной иммерсии


Результаты измерений концентрации КОЕ (1/м3) для каждого помещения по точкам отбора представлены в Протоколах лабораторный испытаний (см. Приложения).
Колонии плесневых грибов (в основном, пенициллы или аспергиллы) в исходных пробах составляли около 50-60%. Колонии с морфологией, характерной для актиномицетов, составляли около 1%. По результатам окраски фуксином, большинство микроорганизмов, обнаруженных в пробах воздуха, составляли кокки, в основном, микрококки, тетракокки и стафиллококки (окрашиваются по Граму, неокрашенные бактерии имеют золотистый цвет), около 10% представлены стрептококками.

Характерный вид проб до начала испытаний и после работы приборов «Тиокрафт» представлен на рисунке 1.

Расчет концентрации микроорганизмов в пробе проводился в соответствии с рекомендациями МУК 4.2.734-99. Для этого подсчитанное количество микроорганизмов в пробе умножалось на коэффициент наиболее вероятного числа КОЕ для пробоотборника Флора100 (по таблице методических указаний). Полученноезначение КОЕ приводилоськ объему 1 м3 путем умножения на коэффициент пропорциональности, зависящий от объема отобранной импактором пробы.

Результаты измерений КОЕ обрабатывались графически методом контурного картирования в проекции XYZ c построением пространственной интерполяционной сетки по методу Шепарда в программных пакетах Origin 7.5-9.0.

Проросшие колонии микроорганизмов на чашке Петри в типичных пробах воздуха взятых в кабинете Руководителя (No7):
а) до начала испытаний; б) после работы приборов 

Рисунок 2

Изменение полей концентрации КОЕ в кабинете Руководителя в ходе проведения испытаний обеззараживающей способности приборов «Тиокрафт»

Рисунок 3

Изменение полей концентрации КОЕ в кабинете Главного бухгалтера в ходе проведения испытаний обеззараживающей способности приборов «Тиокрафт»

Рисунок 4

Изменение полей концентрации КОЕ в помещении «Open Space» в ходе проведения испытаний обеззараживающей способности приборов «Тиокрафт»

Выводы

Микробиологическое состояние воздуха помещений в значительной степени, до 3-5 раз, может быть улучшено применением обеззараживающих фотокаталитических устройств «Тиокрафт» в присутствии людей и без применения дополнительных специальных мероприятий.

В результате помещения могут соответствовать требованиям, предъявляемым к особо чистым помещениям класса (А)*.

*Постановление Главного государственного санитарного врача РФ от 06.06.2003 No124 (ред. от 04.03.2010) о допустимых уровнях бактериальной обсемененности воздушной среды помещений лечебных учреждений